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逆轉(zhuǎn)錄（reverse transcription）是以 RNA 為模板合成 DNA 的過程，即 RNA 指導(dǎo)下的 DNA 合成，逆轉(zhuǎn)錄實驗包括3大要素，分別是引物、逆轉(zhuǎn)錄酶和 RNA 模板：
1. 引物：逆轉(zhuǎn)錄引物主要有3種，包括 Oligo（dT）、Random Primers 和基因特異性引物（GSP）。其中 Oligo（dT）具有12-20個 T 堿基，并且與真核生物 mRNA 的 3’Poly A 尾配對，可合成全長的 cDNA，但僅擴增有 polyA 尾的 mRNA ，對模板質(zhì)量要求高，較適合克隆實驗。而 Random Primers 具有6-9個堿基，可隨機識別模板并結(jié)合，適合復(fù)雜結(jié)構(gòu)和微量模板，但特異性低，小片段多，適合后續(xù) qPCR 實驗?；蛱禺愋砸锟梢宰R別特定模板序列，具有特異性強，靈敏度高的特點，但需合成特定的序列。所以根據(jù)不同實驗需求可進(jìn)行相應(yīng)引物的選擇。
2. 逆轉(zhuǎn)錄酶：一種是來自純化的禽成髓細(xì)胞瘤病毒（AMV），由兩條肽鏈組成，具有聚合酶活性和很強的 RNaseH 活性，它最適溫度是42℃，最適 pH8.3，在高反應(yīng)溫度時可消除 mRNA 的二級結(jié)構(gòu)對逆轉(zhuǎn)錄的阻礙，然而高水平的 RNaseH 的活性既抑制 cDNA 產(chǎn)生也限制其長度。另一種來源于鼠白血病病毒（M-MLV），是單肽鏈的，有 RNA 聚合酶活性和相對較弱的 RNaseH 活性，最適溫度37℃，最適 pH7.6，較弱的 RNaseH 活性對獲得2-3kb的 mRNA 的全長 cDNA 有很大好處。
3. RNA 模板：通常利用紫外分光光度計檢測純度，要求A260/280=1.9~2.1，A260/230=2.0~2.2。利用瓊脂糖凝膠電泳檢測 RNA 的完整度，完整的總 RNA 在進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳時會產(chǎn)生清晰的28S 和18S rRNA 條帶（真核樣品），28S rRNA 條帶的強度應(yīng)當(dāng)大致為18S rRNA 條帶的兩倍，并且無 gDNA 和蛋白殘留。
上面給大家簡單介紹了一下逆轉(zhuǎn)錄的3大要素，除此之外在實際的操作過程中，還會有各種各樣的讓問題我們措手不及，下面給大家一一詳細(xì)解答！
1. 如何提高 RT-PCR 反應(yīng)的靈敏度與特異性？
① 確定模板 RNA 完整性好，無 DNA 污染。
② RNA 模板中不應(yīng)含有擴增反應(yīng)抑制劑。
③ 使用適量的模板 RNA ，模板量太多會降低特異性，太少會導(dǎo)致擴增不出條帶或條帶太弱。
④ 若模板中有二級結(jié)構(gòu)，可通過提高逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)溫度來提高擴增效果。
2. RNA 中含有逆轉(zhuǎn)錄抑制劑時，怎么處理？
逆轉(zhuǎn)錄抑制劑包括：SDS 、EDTA 、甘油、焦磷酸鈉、亞精胺和胍鹽等等。可將已確定的高質(zhì)量 RNA 模板同樣品混合，同高質(zhì)量 RNA 模板比較產(chǎn)量以檢測 RNA 抑制劑；若高質(zhì)量模板 RNA 與樣品混合后產(chǎn)量降低，則說明樣品中存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑，可用70%（v/v）乙醇對 RNA 沉淀進(jìn)行清洗，以除去抑制劑。
3. 逆轉(zhuǎn)錄后的 qPCR 實驗 Ct 值偏大或者普通 PCR 產(chǎn)量低。
① RNA 模板質(zhì)量差，需要重新制備 RNA 模板，可通過瓊脂糖凝膠電泳檢測質(zhì)量。
② 逆轉(zhuǎn)錄后的 cDNA 中含有高濃度的模板 RNA 和逆轉(zhuǎn)錄試劑成分，可能會對后續(xù)的PCR 產(chǎn)生抑制作用，所以可以適當(dāng)梯度提高 cDNA 稀釋比例（通常來說可將 cDNA 原液稀釋5-10倍，其最佳模板加入量以擴增得到的 Ct 值在20-30個循環(huán)為好）。
③ 起始的 RNA 模板量低，需要減少稀釋倍數(shù)或增加 RNA 模板量。
④ 基因本身原因（復(fù)雜和長度），可以重新設(shè)計復(fù)雜基因的引物，避免復(fù)雜結(jié)構(gòu)?；蛘哂萌椒ǔ绦蚧蜓娱L兩步法程序的延伸時間。
⑤ 逆轉(zhuǎn)錄或者定量產(chǎn)品性能差，可以通過做平行不用品牌產(chǎn)品對比實驗，對比逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)品性能。
4. 逆轉(zhuǎn)錄酶擴增效率評估，應(yīng)該關(guān)注哪些指標(biāo)？
建議： qPCR-ct 值，或者 PCR 產(chǎn)量
如果想比較逆轉(zhuǎn)錄性能，最為直接的還是后續(xù)做 qPCR 或者 PCR 平行對比實驗，這種方法相對較為準(zhǔn)確。
不建議：cDNA 中間產(chǎn)物濃度測定 or 其他方法。
逆轉(zhuǎn)錄完成后是不建議測定產(chǎn)物濃度的，由于逆轉(zhuǎn)錄后產(chǎn)生 RNA-cDNA 雜交鏈，溶液中的 RNA 和部分 DNA 會對吸光值產(chǎn)生影響，所以測定出來的產(chǎn)物濃度并不準(zhǔn)確，即使利用同一批次 RNA 和不同品牌的試劑盒進(jìn)行對比實驗，由于不同品牌之間的逆轉(zhuǎn)錄體系具有或多或少的差異，其體系中的各種離子等都能對吸光度產(chǎn)生影響，所以測定的結(jié)果也沒有可比性。
優(yōu)化及注意事項：
① 逆轉(zhuǎn)錄 PCR 時，提取 RNA 是關(guān)鍵，需分離高質(zhì)量 RNA（純度和完整性）。
② 整個操作過程需使用去 RNA 酶的槍頭、EP 管等耗材。
③ 逆轉(zhuǎn)錄過程中要謹(jǐn)防 RNA 酶的污染，加入 RNA 酶抑制劑。
④ 為了防止非特異性擴增，必須設(shè)陰性對照。
⑤ 逆轉(zhuǎn)錄實驗應(yīng)全程在冰上操作完成，操作過程應(yīng)避免 RNase 污染。
⑥ 提高逆轉(zhuǎn)錄預(yù)熱溫度（也可根據(jù)相應(yīng)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行調(diào)整）。
⑦ 減少基因組 DNA 污染，可使用去基因組的逆轉(zhuǎn)錄試劑盒。
